1.病原学 乳头瘤病毒（Papillomaviruses, PV）为无包膜双链DNA病毒，可感染粘膜和/或皮肤上皮细胞，具有高度宿主特异性。人乳头瘤病毒（human papillomaviruses, HPV）可导致人类宫颈癌、皮肤癌、口腔癌、肛门癌等恶性病变，目前尚无针对HPV感染后病变或引起恶性癌症的治疗方法。由于病毒的宿主特异性，HPV感染人，不能感染其它动物，这限制了病毒感染动物模型的建立。 2011年印度科学家发现小鼠乳头瘤病毒（Mouse papillomavirus type 1, MmuPV1）可感染实验室小鼠品系，首次为乳头瘤状病毒感染小鼠实验模型制备提供机会。与HPV一样，MmuPV1也属于乳多空病毒科乳头瘤病毒属，由闭合环状双链DNA分子组成，其长度为7510bp，含有一条编码链，至少编码7个ORFs。 乳头瘤病毒对热敏感，70℃ 30分钟可灭活，但在室温干燥环境下3天，病毒活力仍有50%。乙醇、异丙醇、戊二醛、邻苯二甲醛、苯酚等常用消毒剂均无法杀灭病毒。0.55%次氯酸钠和1.2%过氧乙酸可灭活病毒。

小鼠尾部MmuPV1感染 三溴乙醇小鼠麻醉，按每公斤体重腹腔注射240mg。待小鼠麻醉后，利用刀片在小鼠尾部反复轻轻刮擦20次左右，取10μl病毒液（6×108 VGE）滴加到刮擦过的尾部。每周观察2次，待尾部病变直径接近1cm时，安乐小鼠并收集肿瘤。部分肿瘤组织置于福尔马林固定液用于组织学研究；部分肿瘤组织置于液氮中速冻，并保存于-80℃进行后续感染和分子研究。 小鼠尾部MmuPV1 DNA提取 使用分离柱法分离组织DNA。取MmuPV1感染尾部的增生部位，利用DNeasy Blood & Tissue Kit （Qiagen）。提取方法如下：将25mg切成尽量小块置于1.5ml EP管中，加入180μl Buffer ATL及20μl Proteinase K，震荡混匀，56℃孵育1-3h至增生组织完全裂解，孵育期间间断震荡；震荡15s，加入200μl Buffer AL，震荡充分混合，加入200μl无水乙醇，再次充分震荡混匀；混合物转移至DNeasy Mini spin column，6,000×g（8,000 rpm）离心1min，弃废液；柱子中加入500μl Buffer AW1，6000×g（8000 rpm）离心1min，弃废液；柱子中加入500μl Buffer AW2，20,000×g（14,000 rpm）离心3min，弃废液；将珠子置于新的1.5ml或2ml离心管，在柱子的膜上加200μl Buffer AE，室温静置1min，≥6000×g（8000 rpm）离心1min。 小鼠尾部MmuPV1的PCR检测 将小鼠尾部增生组织置于PBS中，利用匀浆器高速匀浆3min。匀浆液10，000 rpm离心3min，将上清液转移到新1.5ml EP管中。配置反应体系，上下游引物分别为对MmuPV1 E2基因，MmuPV1_E2_1（5`- GCC CGA AGA CAA CAC CGC CAC G-3`）和MmuPV1_E2_2（5'-CCT CCG CCT CGT CCC CAA AAA ATG G-3'）。反应条件：95℃ 10min；95℃ 15s；60℃ 60s，68℃ 45s，40个循环；68℃ 10min。 小鼠尾部MmuPV1感染组织病理学检测 安乐小鼠，解剖采集尾部增生部位皮肤，进行苏木精-伊红（HE染色）。方法简述：组织块经10%的多聚甲醛固定、脱水透明后，置于熔化的石蜡中进行包埋，进而制作石蜡切片；切片脱蜡后进行HE染色；进一步的脱水透明，封片，显微镜下观察。 RNAscope原位杂交 安乐小鼠，解剖采集尾部增生部位皮肤置于10%多聚甲醛固定、脱水透明后，置于熔化的石蜡中进行包埋，进而制作石蜡切片，切片进行后续RNAscope原位杂交，具体实验步骤如下： （1）载玻片脱蜡：60℃烤片1h，二甲苯脱蜡2次，每次5min，100%酒精2次，每次1min，切片朝上放到吸水纸上，室温静置干燥5min； （2）双氧水靶标修复：切片滴加约5-8滴RNAscope®双氧水，室温孵育10min，蒸馏水清洗切片3-5次后，将载玻片浸没到煮沸的1×RNAscope®靶标修复液中放置15min，蒸馏水清洗3-5次，100%乙醇中清洗1次，室温静置干燥； （3）画疏水圈：使用ImmedgeTM疏水笔在样本周围化疏水圈2-4次； （4）将载玻片置于HybEZTM载玻片架中，滴加5滴RNAscope®蛋白酶plus，放入HybEZTM湿盒，放回40℃杂交炉 30min。蒸馏水洗3次； （5）探针杂交：载玻片滴加4滴E1^E4探针，再放入湿盒，杂交炉40℃孵育2h，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （6）杂交Amp1：载玻片上滴加4滴Amp1，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育30min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （7）杂交Amp2：载玻片上滴加4滴Amp2，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育15min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （8）杂交Amp3：载玻片上滴加4滴Amp3，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育30min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （9）杂交Amp4：载玻片上滴加4滴Amp4，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育15min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （10）杂交Amp5：载玻片上滴加4滴Amp5，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育30min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （11）杂交Amp6：载玻片上滴加4滴Amp6，放回湿盒，杂交炉杂交炉40℃孵育15min，将载玻片浸没于1×清洗缓冲液中，室温，每次2min； （12）信号检测：弃掉液体后，载玻片上滴加120μl DAB工作液，室温静置10min，去除DAB工作液，蒸馏水洗3-5次； （13）载玻片复染：载玻片放入苏木精染色液中，室温静置2min，蒸馏水洗3-5次，利用0.02%氨水洗一次，蒸馏水再洗3-5次； （14）载玻片脱水：载玻片放入70%乙醇，室温静置2min，100%酒精，室温静置2min，100%酒精，室温静置2min，二甲苯溶液，室温静置5min； （15）封片：载玻片风干后，滴加1滴Cytoseal封片剂，盖上盖玻片，风干载玻片5min。 转录组差异分析 TRIzol法提取尾部增生皮肤（实验组）及尾部正常皮肤（空白对照组）样本RNA，通过琼脂糖凝胶电泳分析RNA完整性及是否有DNA污染、Nanodrop进行RNA浓度和纯度检测。送到北京诺禾致源科技股份有限公司测序平台进行RNA测序。通过文库构建并测序获得原始测序序列后进行信息分析流程，主要由两个阶段：a）评估测序数据质量；b）信息挖掘及分析。将实验组与对照组RNA-seq序列进行对比，鉴定分析差异基因表达和聚类分析（包括差异基因数目统计、GO富集分析、KEGG通路富集分析），采用edgeR软件进行表达差异显著性分析。

结核病是由结核分枝杆菌（结核菌）引起的一种慢性传染性疾病，结核感染通常会累及肺、淋巴系统及其它多组织器官。除少数发病急促外，临床上多呈慢性过程。常有低热、乏力等全身症状和咳嗽、咯血等呼吸系统表现。感染后潜伏期4～8周，其中80%发生在肺部，其他部位（颈淋巴、脑膜、腹膜、肠、皮肤、骨骼）也可继发感染。

1.1实验材料  C57BL/6N 小鼠（北京维通利华，SCXK (京)-2016-0006），右旋糖酐铁注射液（江西创导动物保健品有限公司），血清铁、铁蛋白、转铁蛋白及可溶性转铁蛋白受体检测试剂盒（酶免公司），组织铁检测试剂盒（南京建成生物工程研究所），普鲁士蓝染色试剂盒（Solarbio），结核分枝杆菌标准株 H37Rv（菌号为 93009，本室保存），中性罗氏培养管（珠海贝索生物），BACTEC MGIT 7H9 98 分枝杆菌快速培养管（BD 公司）。 1.2 实验方法 1.2.1 铁过载小鼠模型建立  6~8 周龄 SPF 级雌性 C57BL/6N 小鼠随机分成阴性对照、低剂量、中剂量和高剂量 4 个小组，实验组分别腹腔注射右旋糖酐铁3.75、7.5、15 mg/次，阴性对照组小鼠腹腔注射等体积生理盐水，3 次/周，共计 4 周。定期观察小鼠生长及精神状态，称重并记录。动物实验经本所实验动物管理和使用委员会（IACUC）批准，批准号为：ZLJ2019001。 1.2.2 血清生化指标与组织铁含量测定   建模完成后将小鼠摘眼球采血，4 ℃凝结过夜，2000 g 4 ℃离心 10 min，分离小鼠血清并检测血清铁、铁蛋白、转铁蛋白及可溶性转铁蛋白受体含量。解剖取小鼠心脏，肝脏、脾脏、肺、肾脏及小肠等组织器官，称重后加 1ml 生理盐水充分研磨并裂解组织碎片，12000 g 4 ℃离心 20 min，取上清并测定蛋白浓度。 血清生化检测按试剂盒说明书进行，组织铁测定则按试剂盒测定方法计算相同蛋白浓度下各组织铁含量。 1.2.3 铁过载小鼠 Mtb 感染 SPF 级 C57BL/6N 随机分成空白对照组、空白 Mtb 感染组、中剂量铁过载模型组和中剂量铁过载模型 Mtb 感染组，每组 6 只。其中 Mtb 感染组小鼠经尾静脉注射对数生长期 H37Rv 单细胞菌悬液 100 μl（1×10 6 CFU/ml），空白对照组注射等剂量无菌生理盐水。本所 ABSL-3 实验室（国卫 ABSL3-059） 正常饲喂， 观察并记录小鼠临床表现，感染后 4 周解剖小鼠。 1.2.4 小鼠组织荷菌量测定 ABSL-3 实验室动物解刨台中解剖感染小鼠，无菌取小鼠肺、脾和肝脏组织；拍照记录肺、脾和肝脏等器官大体病变情况，取小鼠左肺、脾头及肝小叶于生物 安全柜内称重，依次经 2%稀硫酸溶液、生理盐水漂洗 30 s，1 ml 生理盐水温和 匀浆后进行 10倍倍比稀释，分别取 10-3，10-4和 10 -5 稀释液 50 µl 均匀涂布于中性罗氏培养管内，37℃培养 4 周，计算相应的组织器官荷菌量。另取 10 -1稀释液 500 μl 接种于 BD BACTEC MGIT 960 培养系统，通过记录报阳时间进行结核菌的快速检测。 1.2.5 组织切片 HE染色与铁染色 小鼠各组织器官，10%中性福尔马林溶液固定 48 h。组织按长轴最大横切面修块、梯度乙醇脱水、石蜡包埋并切成 5 µm 厚度切片，HE 染色后扫描载玻片并保存为 NanoZoomer 数字病理图像，不同视野下拍照并进行组织病理学分析。铁染色组织切片脱蜡至水，切片入 Perls 染液浸染 20 min，蒸馏水充分冲洗切片5 min，入核固红染色液，淡染细胞核 10 min，自来水冲洗 5 s。常规脱水透明，中性树胶封固，晾干后拍照观察其病理形态改变及铁沉积程度。 1.3 统计学分析   SPSS16.0 进行统计学处理，结果以平均数±标准差表示。不同实验处理组之间差异比较采用单因素方差分析，P ＜ 0.05 为差异有统计学意义。柱形图采用 GraphPad Prism 5 软件制作。

新型冠状病毒肺炎（Corona Virus Disease 2019，COVID-19），简称“新冠肺炎”，是指2019新型冠状病毒（2019-nCoV）感染导致的肺炎。老年人及有基础疾病者感染后病情较重。

实验材料     1.1  SARS-CoV-2（原2019-nCoV, HB-01），由中国疾控中心谭文杰教授提供。 1.2 实验动物 选用SPF级2-4岁雄性恒河猴，2.5-3.5kg，来自中国医学科学院医学实验动物研究所（IACUC 批准号：BLL20001） 实验环境 所有涉及的病毒实验操作全部在中国医学科学院医学实验动物研究所ABSL-3实验室完成，该实验室已经具备相关实验室和福利伦理资质。 病原培养鉴定 将新型冠状病毒接种到Vero细胞进行分离和储存。Vero细胞培养在DMEM（英潍捷基, 美国）添加10%胎牛血清，100 IU/ml 青霉素和100 μg/ml链霉素的培养基中，环境为37°C，5%CO2。新型冠状病毒的病毒滴度用标准的半数细胞感染率（a standard 50% tissue culture infection dose，TCID50）进行分析。 实验操作规程 （1） 感染途径：经气管感染； （2） 感染剂量：1×106 TCID50 只； （3） 感染体积：1ml/只； （4） 对照组：等体积 PBS。 4.3 动物模型分析 （1）症状观察：感染后，每天观察动物一般症状，记录体重和体温等。 （2）病毒载量：定时收集各组动物脏器，进行RNA抽提，利用RT-PCR技术，检测组织中病毒载量。RT-PCR所用的新型冠状病毒引物如下：上游为5’-TCGTTTCGGAAGAGACAGGT-3’ 下游为5’-GCGCAGTAAGGATGGCTAGT-3’。 （3）病毒分离：肺组织在 DMEM 溶液中研磨制备成匀浆，离心分离上清后，接种于Vero细胞分离病毒并观察细胞病变。 （4）影像学检查：感染后 0,3,5,7,9,11,13,15天做X-RAY检测。 （5）病理学观察 用新鲜的组织福尔马林固定，制备石蜡切片，用HE，免疫组化或荧光染色，镜下观察。 （6）免疫学检测：感染后第3，4，6，7，11，14天全血进行白细胞、淋巴细胞、单核细胞检查和CD3+,CD4+,CD8+,巨噬细胞，单核细胞，以及血清中特异性抗体。 4.4 数据统计处理方法 所有的数据用GraphPad Prism 6.0 软件分析，感染组小鼠和其他对照组小鼠用T 检验方法分析差异，显著性差异用*p ﹤ 0.05, **p﹤0.01 或者 #p﹤0.05, ##p﹤0.01 表示。

亨廷顿病（Huntington's disease， HD），又称大舞蹈病或亨廷顿舞蹈症(Huntington's chorea)，是一种常染色体显性遗传性神经退行性疾病。

1、实验材料 （1）实验动物：猕猴，5-6周岁，体重5-7公斤 （2）试剂：AAV-Exon1-103Q-GFP、三碘三酰苯、盐酸氯胺酮、异氟烷 （3）仪器：脑立体定位仪、X光机、微量注射泵、麻醉机 2、实验环境     普通级动物饲养设施，明暗交替时间：12/12，动物单笼饲养，笼具内有玩具等丰容措施。 3、腺相关病毒载体构建 AAV-Exon1-103Q-GFP： 对照采用AAV-GFP和1-19Q  

Use of adeno-associated virus-mediated delivery of mutant huntingtin to study the spreading capacity of the protein in mice and non-human primates. Neurobiol Dis. 2020;141:104951. 

正常情况下，人体免疫系统对自身成分不会产生反应，称自身免疫耐受。自身免疫性疾病是机体自身免疫耐受机制失调或破坏，导致自身组织器官损伤或出现功能异常的免疫病理状态。自身免疫性疾病种类很多，其诱因和临床表现各不相同，但多呈反复发作和慢性迁延趋势，严重影响患者的工作和生活质量。 自身免疫性疾病典型症状： 多器官系统受累，可有发热、面部红斑、关节痛、脱发、口腔溃疡等，可累及肾脏、血液系统、心血管及神经系统等。 　　临床表现为： 　　⑴病人血清中常可检出高浓度自身抗体。 　　⑵出现与免疫反应有关的病理变化，病变部位主要是有淋巴细胞和浆细胞浸润为主的慢性炎症。 　　⑶大多数原因不明，可能与遗传、感染、药物及环境等因素有关。 　　⑷病程一般较长，多为发作与缓解反复交替出现。 　　⑸一般女性多于男性。 　　⑹可进行动物复制。 在正常的免疫过程中，T细胞的有效激活是其能发挥免疫效应的前提及保证，若T细胞的活化不完全或者处于免疫应答无能状态时，则不能发挥杀灭肿瘤细胞的作用。T细胞的活化需要双信号同时刺激，即第一信号和第二信号的协同作用。第一信号来自于APC细胞表面的抗原肽-MHC复合物和T细胞表面的相对应受体相结合所传导，第二信号来自于APC细胞表面的共刺激分子与T细胞表面的相对应受体相结合所传导。 目前已经知道的最主要的共刺激分子是B7-1和B7-2，他们所对应T细胞表面受体为CD28，他们结合传递的是刺激性第二信号，和第一信号协同刺激T细胞的活化。近年来的研究发现，CTLA4与CD28会竞争性的与B7蛋白家族相结合，并且CTLA4与B7蛋白结合的亲和力是CD28的二十多倍，他们结合后在免疫反应的前期阶段传递抑制性信号，导致T细胞的活化受到抑制。免疫检验点CTLA4相当于是机体进化出来的刹车机制，它在维持免疫内稳态及防止免疫系统用力过猛之间发挥着重要作用，肿瘤细胞可以通过激活CTLA4信号通路从而躲避机体的抗肿瘤免疫效应。 1995年, 加拿大Tak Mak和美国Arlene Sharpe的实验室报道CTLA-4基因敲除小鼠会自发出现严重的自身免疫性疾病并迅速死亡。

利用CRISPR /Cas9 技术，建立CTLA4基因敲除小鼠模型，利用PCR、RT-PCR和Western Blot 的方法进行鉴定及分析。

在正常的免疫过程中，T细胞的有效激活是其能发挥免疫效应的前提及保证，若T细胞的活化不完全或者处于免疫应答无能状态时，则不能发挥杀灭肿瘤细胞的作用。T细胞的活化需要双信号同时刺激，即第一信号和第二信号的协同作用。第一信号来自于APC细胞表面的抗原肽-MHC复合物和T细胞表面的相对应受体相结合所传导，第二信号来自于APC细胞表面的共刺激分子与T细胞表面的相对应受体相结合所传导。 目前已经知道的最主要的共刺激分子是B7-1和B7-2，他们所对应T细胞表面受体为CD28，他们结合传递的是刺激性第二信号，和第一信号协同刺激T细胞的活化。近年来的研究发现，CTLA4与CD28会竞争性的与B7蛋白家族相结合，并且CTLA4与B7蛋白结合的亲和力是CD28的二十多倍，他们结合后在免疫反应的前期阶段传递抑制性信号，导致T细胞的活化受到抑制。免疫检验点CTLA4相当于是机体进化出来的刹车机制，它在维持免疫内稳态及防止免疫系统用力过猛之间发挥着重要作用，肿瘤细胞可以通过激活CTLA4信号通路从而躲避机体的抗肿瘤免疫效应。

利用CRISPR /Cas9 技术，建立CTLA4基因人源化小鼠模型，利用PCR、RT-PCR和Western Blot 的方法进行鉴定及分析。

黑色素瘤指有恶性变化的色素斑痣，是由交界痣或混合痣性质的痣发展而来。虽然不一定由斑痣恶变，但是慢性刺激和不恰当的治疗对斑痣转变成黑色素瘤有很大的关系。黑色素瘤表现为黑痣突然出现或迅速长大，色泽不断加深，四周出现彗星状小瘤或色素环，局部发生疼痛、感染、溃疡或出血，出现肿大的淋巴结。肿瘤为单一实性，常有包膜，颜色可黑色、红棕色，深浅程度不一，也可无色素性。大多数黑色素瘤是原发性的，累及成人和儿童，特别是有神经皮肤症状的儿童。肿瘤好发于下肢，其次是头、颈、上肢、眼、指甲下和阴唇等处。早期即能由淋巴道和血行转移至肝、脑、骨、黏膜等处。经常受摩擦的手掌、足底和眼部的黑痣以及位于表皮和真皮交界处的黑痣容易恶变，被认为是黑色素瘤的前驱期。

包括实验材料（实验动物、试剂、仪器）、实验环境、细胞培养/载体构建/蛋白表达/病原培养鉴定方法、实验操作规程、动物处理伦理等内容。 （一）构建GPR68-FloxP小鼠 GPR68只有一个蛋白编码区exon1。因此在exon1的两边设计gRNA靶点，将FloxP基因插入GPR68基因两端。 图1 插入位点设计 （二）CD4+T细胞特异性敲除GPR68小鼠的构建 图2 GPR68-FloxP小鼠与CD4-Cre小鼠杂交  将GPR68-Flox/Flox小鼠与CD4-Cre小鼠杂交，子代小鼠即为CD4+T细胞GPR68特异敲除小鼠。 （三）皮下移植黑色素瘤模型的构建 1、用0.25%胰酶消化细胞收集细胞悬液，用预冷的PBS重悬细胞，1000rpm离心5min，洗涤细胞两次，除去单细胞悬液中的血清。 2、对细胞进行计数，用PBS稀释细胞至浓度为2.5×106个/mL，接种体积控制在0.2mL。 3、采用1mL无菌注射器于小鼠腋下部位接种细胞。接种时将单细胞悬液充分混匀，防止细胞成团导致活性降低以及接种细胞数不均，左手固定小鼠，右手执注射器，针头在皮下穿行时避免刺破皮肤与肌肉，到达接种位点并注射完毕后退出针头时避免细胞悬液溢出。 4、每3天用游标卡尺测量肿瘤大小，测量肿瘤最长和最短直径。肿瘤体积计算公式为V=a×b2/2(a为长轴，b为短轴)。 5、接种后第20天实验结束，采用颈椎脱臼法处死小鼠，解剖取出肿瘤组织，称量小鼠肿瘤重量。

肠道干细胞位于肠粘膜隐窝基底部，即基底隐窝是肠道干细胞的细胞库。正常情况下，位于隐窝基底部的肠道干细胞不断向隐窝顶部(肠腔方向)迁移，整个迁移过程大约3-5d，在迁移过程中肠道干细胞分化形成不同的肠粘膜细胞。

实验动物：Stat5 flox小鼠，Villin-CreERT2小鼠 试剂：tamoxifen(50mg/kg)，4%PFA 仪器：冰冻切片机，leica DMI8活细胞工作站 实验操作规程：将Stat5 flox小鼠与Villin-CreERT2小鼠杂交，在小鼠4周龄时，提取杂交小鼠鼠尾DNA，通过凝胶电泳检测小鼠基因型。STAT5基因PCR引物序列如下1. GAA AGC ATG AAA GGG TTG GAG 2.AGC AGC AAC CAG AGG ACT AC  3.AAG TTA TCT CGA GTT AGT CAG G ,Villin-CreERT2基因PCR引物序列如下:1 GTG TGG GAC AGA CAA ACC  2.ACA TCT TCA GGT TCT GCG GG。选取双阳性小鼠，6~8周龄，体重20~22g。按每只小鼠连续5天按50mg/ kg腹腔注射他莫西芬。诱导后CO2麻醉处死小鼠，取肠道组织，用冷PBS冲洗肠道组织，置于4%多聚甲醛中固定过夜，1×PBS溶液里浸泡5min。制作冰冻切片及石蜡切片，免疫组化及免疫荧光染色观察肠道干细胞的变化。

1.Liu R, Moriggl R, Zhang, et al. Constitutive STAT5 activation regulates Paneth and Paneth-like cells to control Clostridium difficile colitis[J]. Life Sci Alliance, 2019,2(2):296-316.

肠道干细胞位于肠粘膜隐窝基底部，即基底隐窝是肠道干细胞的细胞库。正常情况下，位于隐窝基底部的肠道干细胞不断向隐窝顶部(肠腔方向)迁移，整个迁移过程大约3-5d，在迁移过程中肠道干细胞分化形成不同的肠粘膜细胞。

实验动物：Lgr5-EGFP-CreERT2小鼠，ROSA26-tdTomato小鼠，Stat5 或 icS5 floxed小鼠 试剂：tamoxifen(100mg/kg)，4%PFA 仪器：冰冻切片机，leica DMI8活细胞工作站 实验操作规程：将Lgr5-CreGFP;RstdToamto-CreER 小鼠系与Stat5 或 icS5 floxed小鼠杂交，分别为对照组（Lgr5-CreGFP;RstdToamto-CreER）；实验1组（Lgr5-CreGFP；RstdToamto-CreER;Stat5）；实验2组（Lgr5-CreGFP；RstdToamto-CreER;icS5）。在小鼠4周龄时，提取杂交小鼠鼠尾DNA，通过凝胶电泳检测小鼠基因型。Lgr5基因PCR引物序列如下(扩增目的片段长174bp)。Common 8060：5'-CTGCTCTCTGCTCCCA GTCT-3'；Wild Type 8061：5'-ATACCCCATCCCTT TTGAGC-3'；Mutant 9402：5'-GAACTTCAGGGTC AGCTTGC-3'。PCR条件：预变性94℃3min；94℃变性30s，66℃复性1min，72℃延伸30s，35个循环；72℃延伸5min。选取双阳性小鼠，6~8周龄，体重20~22g。实验组小鼠按100mg/kg体重腹腔注射他莫昔芬，对照组小鼠注射等量的玉米油。通过 Tam 诱导， 然后分别在 12 小时和 1, 3, 5, 7, 30， 122和280天麻醉处死各组小鼠。分别取结肠、空肠、回肠组织，用冷PBS冲洗肠道组织，纵向剖开，放入多聚甲醛中固定过夜，制作冰冻切片在子代肠上皮细胞中追踪检测是否去除 Stat5 或活化 STAT5 能够改变肠上皮中的tdToamto 信号强度和位置.

免疫系统人源化小鼠模型可以用于所有针对人免疫系统所产生的疾病。该模型在细胞发育、感染性疾病、自身免疫病以及肿瘤治疗等领域有很多的应用，为研究临床疾病提供了良好的研究平台。

1.实验动物 NRG小鼠：NOD-scid小鼠敲除Rag1和Il2rg，购于美国实验室。 2.细胞 脐带血来自合作医院或者脐血库（有伦理证明）。 根据用CD34纯化干细胞试剂盒，纯化脐带血中造血干细胞，纯化的细胞当天移植。 3.移植 1)选取新生鼠或者4周雌鼠，用X-RAY辐照仪照射，剂量是 1.5Gy。 2)将纯化的 CD34+造血干细胞尾静脉注入照射后的小鼠体内，每只小鼠注射1×10e5 细胞。 3)12周后，采血检测人细胞的比例：抗小鼠 PE-CD45；抗人 APC CY7-CD45；抗人 APC-CD3。 4.制备流程图：  

家族性腺瘤性息肉病(Familial Adenomatous Polyposis，FAP)是结直肠癌发生的癌前病变,患者结直肠部位多发成百上千个腺瘤性息肉，抑癌基因APC的突变是结直肠肿瘤的起始因素。Dove实验室于1990年建立了C57BL/6J-APCmin/+小鼠品系，是在小鼠同源APC基因第850位点发生无义突变，造成其肠道多发腺瘤，被认为是一种良好的FAP小鼠模型。

APCMin/+小鼠，C57BL/6J小鼠，体重秤，清洁级动物房，手术剪，耳标，IVC笼盒，Co60照射的高脂饲料，PBND，蛋白酶K, promega GO TAQ Green Master Mix, takara 100bp DNA ladder, TBE缓冲液，亚甲蓝，小鼠抗人β-catenin单克隆抗体(BD Trans-ductionLaboratorie,Cat,610154),小鼠抗人cyclinD 1(SantaCruz,Cat,sc-8396);二抗为过氧化辣根酶标记山羊抗小鼠IgG, DAB显色液，苏木精染液，显微镜，凝胶成像仪，甘油三酯试剂盒及总胆固醇试剂盒等。 实验操作规程： APCMin/+雄性成年小鼠和C57雌性成年小鼠以1∶2的比例杂交，三个月后，其F1代中既有APCMin/+小鼠（腺瘤表型），又有C 57小鼠，进行全同胞兄妹交配，扩大种群。使用PCR方法对新生小鼠进行剪尾提取基因签定。小鼠在正常饲养时或者高脂饲料饲养时均会出现肠道肿瘤，但是肿瘤数量，体积随着饲养年龄增长而具有明显差异。 

帕金森病（Parkinson’s disease, PD）又称“震颤麻痹”，是一种常见的老年神经系统退行性疾病，具有特征性运动症状，包括静止性震颤、运动迟缓、肌强直和姿势平衡障碍等，还会伴有非运动症状，包括便秘、嗅觉障碍、睡眠障碍、自主神经功能障碍及精神、认知障碍。

1.实验材料 （1）实验动物：健康食蟹猴3～5周岁，体质量3～4kg。 （2）试剂：MPTP（美国sigma公司） （3）仪器：ViewPoint视频追踪系统（法国众维公司） 2、实验环境 普通环境 3、实验操作规程 食蟹猴注射阿托品（0.05mg/kg）20min后行舒泰（4mg/kg）肌注麻醉，将MPTP-HCl（0.2mg/mL）每天（上午9:00）以0.2mg/kg缓慢注入下肢静脉，用Bennazzouz帕金森病临床行为评价量表评价动物模型，当评分达到8分或8分以上，停用MPTP，观察评价7d确定模型，造模后2月评分达到稳定。 4、动物处理伦理 所有动物均在标准单笼饲养，动物房温度16～26℃，相对湿度为40%～70%，动物笼内照度为100～200lx，12h明/12h暗循环交替（7:00开灯/19:00关灯），每日早晚两次（8:00/16:00）喂食标准实验动物猴配合饲料和新鲜水果，并供给不限量安全饮用水，该研究方案已由动物伦理委员会（IACUC）审核并获得批准。